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猪血管内皮细胞分离液试剂盒
猪血管内皮细胞分离液试剂盒
更新时间: 2026-03-10
访问量: 3010
厂商性质: 生产厂家

本品用于分离猪血管内皮细胞
Store at: RT° C 试剂盒内容
试剂:全血及组织稀释液 100ml
试剂:细胞洗涤液 100ml
试剂B: 100ml
试剂C: 100ml
试剂D: 100ml
说明书 1份
试剂D: 100ml
说明书 1份

猪血管内皮细胞分离液试剂盒产品概述:

猪血管内皮细胞分离液试剂盒

Store at:::RT试剂盒规格

试剂盒内容:

全血及组织稀释液100ml

细胞洗涤液100ml

试剂B 100ml

试剂C 100ml

试剂D 100ml

说明书1

猪血管内皮细胞分离液试剂盒

1.适用于人或各种动物本系列产品检索

2.相关试剂及耗材

3.注意事项

4.应用

5.产品性能指标

6.贮藏及保存期限

7.实验前准备

8.使用方法说明及图例

9. HES-TBD550使用说明

10.组织单细胞悬液的制备

11.生产企业

12.参考文献

1.适用于人或各种动物本系列产品检索::::

B....耗材

货号名称及规格生产厂商价格

货号品牌产品名称规格价格

LDS1088CZ TBD 鸡肿瘤浸润组织单个核细胞分离液 100ml 400
LDS1076 TBD 猴外周血单个核细胞分离液 100ml 400
LDS1076P TBD 猴脏器组织单个核细胞分离液 100ml 400
LDS1076Z TBD 猴肿瘤浸润组织单个核细胞分离液 100ml 400
LDS1108 TBD 猪外周血单个核细胞分离液 100ml 400
LDS1108P TBD 猪脏器组织单个核细胞分离液 100ml 400
LDS1110C TBD 猪肠黏膜组织单个核细胞分离液 100ml 400
LDS1108Z TBD 猪肿瘤浸润组织单个核细胞分离液 100ml 400
LDS1091 TBD 马外周血单个核细胞分离液 100ml 400
LDS1091P TBD 马脏器组织单个核细胞分离液 100ml 400
LDS1091Z TBD 马肿瘤浸润组织单个核细胞分离液 100ml 400
LDS1084Y TBD 羊外周血单个核细胞分离液 100ml 400
LDS1084YP TBD 羊脏器组织单个核细胞分离液 100ml 400
LDS1084YZ TBD 羊肿瘤浸润组织单个核细胞分离液 100ml 400
LDS1079F TBD 鱼全血单个核细胞分离液 100ml 400
LDS1079FP TBD 鱼脏器组织单个核细胞分离液 100ml 400

3516 6孔细胞培养板50/Costar 686.00

3513 12孔细胞培养板50/Costar 675.00

3524 24孔细胞培养板100/Costar 1287.00

3548 48孔细胞培养板100/Costar 1542.00

3599 96孔细胞培养板100/Costar 1367.00

430168 25CM细胞培养瓶(密封盖) 20/Corning 113.00

430639 25CM细胞培养瓶(透气盖) 20/Corning 132.00

430720 75CM细胞培养瓶(密封盖) 5/Corning 56.00

430641 75CM细胞培养瓶(透气盖) 5/Corning 59.00

430823 150CM细胞培养瓶(密封盖) 5/Corning 102.00

430825 150CM细胞培养瓶(透气盖) 5/Corning 107.00

431079 175CM细胞培养瓶(密封盖) 5/Corning 133.00

431080 175CM细胞培养瓶(透气盖) 5/Corning 139.00

431081 225CM细胞培养瓶(密封盖) 5/Corning 167.00

431082 225CM细胞培养瓶(透气盖) 5/Corning 176.00

430790 15ml离心管(含泡沫架)50/Corning 92.00

430828 50ml离心管(含泡沫架)25/Corning 55.00

430776 250ml离心管102/Corning 1176.00

4485 1ml移液管50/Costar 55.00 www.tbdscience.com

4486 2ml移液管50/Costar 63.00

4487 5ml移液管50/Costar 92.00

430659 2ml冻存管(可立外旋)50/Corning 117.00

430663 5ml冻存管(可立外旋)50/Corning 131.00

GP2012玻璃吸管10/TBD 30.00

GT201210 10ml玻璃离心管10/TBD 90.00

GT201250 50ml玻璃离心管5/TBD 120.00

L147 100/200目不锈钢滤网TBD 150.00

3. ..注意事项

A本分离液是敏光型的,在运输和贮藏过程中应在18-25避光保存,启封后置4

℃保存避免微生物污染。另外,本品为真空包装,未启封前置于10以下易出现白色结晶,

影响分离效果。

B待分离的样品要求新鲜,避免冷冻和冷藏。分离液和所分离样本一定在20水浴

箱中复温20分钟保证分离液和所分离样本温度在20℃±2时分离效果,且所有操作

过程一定要在无菌条件下进行。

C由于各品牌离心机的性能不同,国内南北地区温度环境和四季的差异,可能影响

分离效果,用户可以调节离心转数,调节离心的时间,摸索*的分离条件(具体分离条件

各实验室自定)。

D使用无静电反应的离心管,推荐使用未经过碱处理的玻璃离心管。

E*抗凝剂选择:EDTA、枸橼酸、肝素。应注意在血液稀释过程中应去除抗凝剂

体积。

F分离过程中所用其他试剂如:羟乙一基淀粉550、全血及组织稀释液、细胞洗涤液及

红细胞裂解液等以我公司产品为*选择,本公司相关系列产品无菌、无病毒、无支原体、

低内毒素水平且无细胞毒性,所获得的细胞可保持完好的生物活性和完整的细胞形态。

4. ..

适用于从人或各种动物血液中分离内皮细胞。

5.. . .产品性能指标

pH 7.0-7.5

渗透压280-340mOsmol/kg www.tbdscience.com

内毒素0.5...EU/ml

无菌直接接种培养14天后培养基澄清

澄明度及不溶性颗粒物50ml溶液中含10μm以上的不溶性微粒以上的不溶性微粒以上的不溶性微粒20粒以下,,,,含25μm以上的不溶性微粒以上的不溶性微粒以上的不溶性微粒5粒以下6.. . .贮藏及保存期限贮藏及保存期限18-25避光保存,有效期两年。启封后置4保存,有效期一周。

注::::若保证无微生物污染,启封后可置4长期保存。但应注意保存温度较低时本分离液易出现白色结晶,影响分离效果。

7. ..实验前准备

A试剂

内皮细胞分离液试剂盒所含试剂、组织匀浆液、胎牛血清

B器材

玻璃离心管、玻璃滴管

水平转子离心机、无菌工作台

8.. . .使用方法说明及图例使用方法说明及图例

A.10ml15ml玻璃离心管中依次小心加入BCD三种液体各2ml,制成梯度界面(各液面分层一定要清晰);

B.取1ml新鲜抗凝血与全血及组织稀释液(Cat#2010C111911混合并小心加于D液之液面上;或取组织匀浆单细胞悬液(细胞浓度为2×108-1×109/ml,具体制备方法参照“二、组织单细胞悬液的制备”)小心加于D液之液面上;

C.400g(约1500/分)离心15分钟(半径15cm水平转子)此时离心管中由上至下细胞分为六层。*层;为血浆层或组织匀浆液层。第二层;;;;为富含内皮细胞的D液层。。。。第三层;为C液层。第四层;为单个核细胞层。第五层;为B液层。第六层;为红细胞层。收集第二层富含内皮细胞的D液层放入含4-5ml细胞洗涤液(Cat#2010X1118)的试管中,充分混匀后,以500g(约1800/分)离心20分钟,弃去上清留沉淀细胞重新悬起。重复洗涤2次即得所需内皮细胞。沉淀细胞

注::::A.提取率约为80%

9. HES. . HES-TBD550使用说明

HES是从支链淀粉衍生出来的,是富含淀粉的复合物,其生理和化学特性主要由羟乙一基

取代度即取代级、平均分子量决定。大量实验表明平均分子量越大对红细胞的凝集作用越强,

有效提高红细胞的沉降速度,从而使红细胞与其它细胞分离。故而,使用HES-TBD550(羟

乙基淀粉550)沉淀法是一种高效的细胞分离方法。间充质干细胞(mesenchymal stem cells ,MSCs)是指一群可向成骨细胞、成脂肪细胞、骨髓基质细胞、肝脏细胞、心肌细胞和神经细胞等多种细胞分化的多潜能组织干细胞,是在细胞治疗、基因治疗中有效发挥作用的理想工程细胞。MSCs不仅存在于骨髓,也可从脐血、外周血中以及脂肪组织、肌肉、胎儿器官、大脑、牙齿中分离。UCB - MSCs的分离、筛选、增殖、分化与脐血样本的选择、培养基的差异以及分离、扩增分化过程中操作技术等多种因素有关。目前用于UCB - MSCs分离的方法有:贴壁筛选法、密度梯度离心法、流式细胞仪法和免疫磁珠法。流式细胞仪法对细胞损伤较大,免疫磁珠法价格相对较贵且由于抗原抗体反应也容易改变细胞原有特性,而HES-TBD550(羟乙一基淀粉550)联合密度梯度离心法常与贴壁筛选法结合使用,可提高所得UCB - MSCs的纯度,目前研究多采用此法。国内不少学者采用羟乙一基淀粉沉淀红细胞,然后再进行离心分离单个核细胞,也取得不错结果。实验证明采用随机数字表法,将每份脐血随机分入两个不同处理组,从而将脐血样本的个体差异减小到zui小程度。结果证实,HES-TBD550(羟乙一基淀粉550)联合密度梯度离心法获得的有核细胞数量明显多于FICOLL密度梯度离心法。本实验采用的羟乙一基淀粉商品名为HES-TBD550(羟乙一基淀粉550),克分子渗透压为308mosmL,胶体渗透压为6836 mmHg,可影响红细胞集聚性沉降率。红细胞集聚是可递性桥接结构形成的结果,由大的HES-TBD550(羟乙一基淀粉550)分子处在红细胞之间联接而成。HES-TBD550(羟乙一基淀粉550)同时还阻碍白细胞和内皮细胞的黏附,并使平均血小板容积呈现微弱地降低,从而有轻度抑制血小板集聚的功能。脐血经HES-TBD550(羟乙一基淀粉550)处理后,可使红细胞沉积至试管底,对其它主要成分包括干细胞无影响。经这样处理后,实验时间相对较短(平均为1.5 h),步骤相对较少,细胞污染几率小,从而使细胞数损失减少。结论证明,与相应的干细胞分离液联合分离使用羟乙一基淀粉沉淀法是一种高效的脐血干细胞分离方法。

10.. . .组织单细胞悬液的制备组织单细胞悬液的制备

注::::A.. ..本说明只提供机械匀浆制备单细胞悬液的方法本说明只提供机械匀浆制备单细胞悬液的方法本说明只提供机械匀浆制备单细胞悬液的方法,,,,酶消化法由于各实验室选取的消化酶消化法由于各实验室选取的消化

酶种类各不相同,,,,请各实验室自行选择进行试验请各实验室自行选择进行试验请各实验室自行选择进行试验。。。。

B. ..全过程及所需试剂要求无菌环境B.全过程及所需试剂要求无菌环境全过程及所需试剂要求无菌环境。。。。

剪碎法::::将组织块放入平皿后,加入少量组织匀浆液及20%胎牛血清;用眼科剪将组织剪至匀浆状,加入5ml组织匀浆液及20%胎牛血清;用吸管吸取组织匀浆,用100目不锈钢滤网(另购)过滤到试管内;离心沉淀1500/分×3 min,再用细胞洗涤液清洗3次,每次以500rpm短时低速离心除去细胞碎片,以200目不锈钢滤网(另购)过滤去细胞团块。作细胞计数并调整细胞浓度为(25)×107/ml。常温下放置,待测细胞的活力。分离前用20%胎牛血清或全血及组织稀释液悬起细胞浓度为2×108-1×109/ml的单细胞悬液备用。匀浆器法:用眼科剪将组织剪成小块;放入70ml组织研磨器内,加入2ml组织匀浆液及20%匀浆器法胎牛血清;缓慢转动研棒,研磨至匀浆;用5ml组织匀浆液及20%胎牛血清冲洗研器;收集细胞悬液,经200目不锈钢滤网(另购)过滤;离心沉淀800rpm×2min,再用细胞洗涤液洗3次,离心沉淀。作细胞计数并调整细胞浓度为(25)×107/ml。常温下放置,待测细胞的活力。分离前用20%胎牛血清或全血及组织稀释液悬起细胞浓度为2×108-1×109/ml的单细胞悬液备用。细胞计数方法:细胞计数法是用来计数细胞悬液中细胞数量的一种方法。一般利用计数板(血球计数板)进行。既可用于分离(散)细胞培养接种前计数所制备的细胞悬液中的细胞数量,也可用于对培养物的细胞数量进行计数。不论计数的对象如何,均须制备分散的细胞悬液。计数与计算过程

1)、在细胞计数板中央放置计数的盖玻片。

2)、用玻璃虹吸管吸取细胞,让虹吸管在盖玻片上或下侧的计数板凹蹧处流出悬液,至

盖玻片被液体充满为止。

3)、置显微镜下计数四角大方格内的细胞总数。对于压线的细胞只计数在上线和左线者,

对于细胞团按单个细胞计数。

4)、按下式计数细胞悬液的密度:

细胞密度=(4个大格细胞总数/4)×104/ml×稀释倍数

公式中乘以104因为计数板中每一个大格的体积为:

1.0mm(长)×1.0mm(宽)×0.1mm(高)=0.1mm31ml1000mm3

细胞计数要点:细胞计数要点:::

A进行细胞计数时,要求悬液中细胞数目不低于104/ml,如果细胞数目很少要进行离

心再悬浮于少量培养液中;显微镜下计数时,遇到2个以上细胞组成的细胞团,应按单个细胞计算。如果细胞团>10%,说明细胞分散不充分;或细胞数<200/10mm2>500/10 mm2时,说明稀释不当,需重新制备细胞悬液。

B要求细胞悬液中的细胞分散良好,否则影响计数准确性。

C取样计数前,应充分混匀细胞悬液,尤其是多次取样计数时更要注意每次取样都要混

匀,以求计数准确;

D数细胞的原则是只数完整的细胞,若细胞聚集成团时,只按照一个细胞计算。如果细

胞压在格线上时,则只计上线,不计下线,只计左线,不计右线。

E操作时,注意盖玻片下不能有气泡,也不能让悬液流入旁边槽中,否则要重新计数。

初学者易犯的错误:初学者易犯的错误:::

A计数前未将待测悬液吹打均匀。

B滴入细胞悬液时盖玻片下出现气泡。

C滴入悬液时的量太多,至使细胞悬液流入旁边的槽中。

11.. . .生产企业

12.. . .参考文献

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